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支原體常規(guī)檢測方法匯總(三)

2021-11-24 15:43來源:威正翔禹|締一生物

大家晚上好!


細(xì)胞培養(yǎng)過程中支原體檢測方法如約而至

第三期來啦!


             


還沒有看前兩期內(nèi)容的小伙伴

可以點擊下方傳送門


支原體常規(guī)檢測方法匯總(一)

支原體常規(guī)檢測方法匯總(二)


上回書和上上回書說道

qPCR檢測法是一種目前比較常用

效果也比較可靠的方法


那除了qPCR

還有沒有其他方法可以檢測呢?

                         


所以今天就來講講

分離培養(yǎng)法DNA染色法

有請兩位主角閃亮登場



01

分離培養(yǎng)法


簡單來說,這種方法的基本原理就是:


分離,然后培養(yǎng)


                               

聽君一席話如聽一席話


展開來講,就是從可疑的細(xì)胞培養(yǎng)體系中取樣,接種到適宜支原體生長的瓊脂平板上。如果樣本中含有支原體,它們就會在這種瓊脂平板上瘋狂生長,最終形成明顯可見的特征性菌落。


操作規(guī)范的情況下,這種方法很少會出現(xiàn)假陰性結(jié)果,檢測精確度很高,因此被譽為支原體檢測金標(biāo)準(zhǔn)


缺點就是檢測時間太長,支原體要長出明顯克隆至少需要4周時間。另一方面,盡管可以檢測絕大多數(shù)支原體種類,分離培養(yǎng)法也有力所不及的時候,例如支原體M. Hyorhinis。因此,該方法能鑒定的支原體種類有限,成為它的另一個缺點。


02

DNA染色法


該方法的實驗思路是:


培養(yǎng)指示細(xì)胞

?

樣品上清液收集

?

上清液接種

?

染色觀察結(jié)果


這一波操作看起來有點復(fù)雜,那展開說說:


將供試品接種于指示細(xì)胞(無污染的Vero 細(xì)胞或經(jīng)國家藥品檢定機構(gòu)認(rèn)可的其他細(xì)胞,供試品應(yīng)對該細(xì)胞生長無影響。下面以Vero細(xì)胞為例)中培養(yǎng)后,用特異熒光染料(如Hoechst 33258)染色,支原體中的核酸也可以被著色,因此,如果待檢測細(xì)胞中含有支原體,那么就會導(dǎo)致指示細(xì)胞被感染,進(jìn)而在細(xì)胞膜或培養(yǎng)基等處發(fā)現(xiàn)藍(lán)色熒光(支原體附著在細(xì)胞膜上,也有可能游離在細(xì)胞培養(yǎng)基中)


指示細(xì)胞培養(yǎng):將指示細(xì)胞復(fù)蘇、傳代,調(diào)整至**狀態(tài),留出適宜的量備用。

樣品上清液收集:無抗生素培養(yǎng)基中加入待檢測樣品后,細(xì)胞需至少傳一代,然后取細(xì)胞已長滿且3 天未換液的細(xì)胞培養(yǎng)上清液待檢。(為了對待檢測樣品中的支原體進(jìn)行富集)

上清液接種:在制備好的指示細(xì)胞培養(yǎng)板中加入一定量的待檢細(xì)胞培養(yǎng)上清,36°C培養(yǎng)3-5 天。指示細(xì)胞培養(yǎng)物至少傳代1 次,末次傳代培養(yǎng)可用6孔板培養(yǎng)3-5 天。

染色觀察:吸出培養(yǎng)孔中的培養(yǎng)液,加入固定液,放置5分鐘。吸出固定液后進(jìn)行10min的二次固定,再次吸出固定液,使蓋玻片在空氣中干燥。加DNA 染料工作液5ml,加蓋,室溫放置30分鐘,漂洗3次,干燥,封片。用熒光顯微鏡觀察。


熒光顯微鏡下可見細(xì)胞表面或培養(yǎng)基中,有大小不等、不規(guī)則的藍(lán)色熒光著色顆粒,則說明有可能存在支原體污染。



對于DNA染色法方法,優(yōu)缺點也是很明顯的


優(yōu)點:


1、適用于一些不易培養(yǎng)的支原體,如豬鼻支原體,分離培養(yǎng)法對該支原體檢測并不可靠,但可用DNA染色法準(zhǔn)確地檢測出來。


2、操作步驟雖然多,但都相對簡單


3、靈敏度尚可。


缺點:


1、時間較長,從Vero細(xì)胞復(fù)蘇、傳代,再到收集上清后再次培養(yǎng),有時甚至需要十幾天時間

2、存在假陽性和假陰性的可能:如一些死亡細(xì)胞釋放出來的DNA會被染成藍(lán)色,出現(xiàn)假陽性;或是由于熒光過若而出現(xiàn)假陰性使結(jié)果出現(xiàn)偏差,因此使用這個方法需要一定的經(jīng)驗。


今天的兩種方法就介紹到這里啦,如果對支原體檢測感興趣,也可以點擊文末的閱讀原文,了解更多詳情!


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